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細胞劃痕實驗原理及步驟及注意事項
更新時間:2020-09-18   點擊次數(shù):9782次

細胞劃痕實驗原理

細胞劃痕實驗(Wound Healing)是一種操作簡單,經(jīng)濟實惠的研究細胞遷移/腫瘤侵襲的體外試驗方法。這種方法的原理是,當(dāng)細胞長到融合成單層狀態(tài)時,在融合的單層細胞上人為制造一個空白區(qū)域,稱為“劃痕”,劃痕邊緣的細胞會逐漸進入空白區(qū)域使“劃痕”愈合,在一定程度上模擬了體內(nèi)細胞遷移的過程,是研究細胞遷移的體外實驗中簡單的方法。細胞劃痕實驗是一種簡單易行的檢測細胞運動的方法,實驗成本低,可以用來檢測貼壁生長腫瘤細胞的侵襲轉(zhuǎn)移能力。


實驗材料:細胞樣品
儀器、耗材:6孔板 marker筆 直尺 *頭 20微升槍頭(滅菌)
試劑、試劑盒:無血清培養(yǎng)基、PBS

實驗步驟:
一.準(zhǔn)備:
所有能滅菌的器械都要滅菌,直尺和marker筆在操作前紫外照射30min(超凈臺內(nèi))
二.流程:
(1)準(zhǔn)備工作:所有能滅菌的器械都要滅菌,直尺和marker筆在操作前紫外照射30min(超凈臺內(nèi))

(2)先用marker筆在6孔板背后,用直尺比著,均勻地劃橫線,大約每隔0.5~1cm一道,橫穿過孔。每孔至少穿過5條線。

(3)在空中加入約5X105個細胞,具體數(shù)量因細胞不同而不同,掌握為過夜能鋪滿。

(4)第二天用槍頭比著直尺,盡量垂直于背后的橫線劃痕,槍頭要垂直,不要傾斜。

(5)用PBS洗細胞3次,去除劃下的細胞,加入無血清培養(yǎng)基。

(6)放入37℃5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。按0、6、12、24小時取樣,拍照。

 

注意的幾個問題:

1、劃痕前是不倒培養(yǎng)基的,劃痕后再倒掉培養(yǎng)基加PBS清洗后加吳學(xué)謙培養(yǎng)基;
細胞長到融合成單層狀態(tài)時,在融合的單層細胞上人為制造一個空白區(qū)域,稱為“劃痕”。劃痕邊緣的細胞會逐漸進入空白區(qū)域使“劃痕”愈合。因此是整個培養(yǎng)皿都加培養(yǎng)基的,觀察部位是劃痕而已。
2、通過算每個視野的劃痕面積,可以通過image J 軟件計算。
3、劃痕法的意義在于,價格低廉,操作簡單。還有很重要的一點在于細胞外圍環(huán)境簡單單純,容易控制。(比如做加藥的,可能會和血清的組分有反映,而且受血清批次的影響,造成誤差。如果是鋪了ECM物質(zhì)的,組分就更復(fù)雜了。)
.劃痕法測量適用的細胞范圍較小,一般只適用于上皮細胞,纖維樣細胞。因為
a.這些細胞本身有遷移能力,且較強。
b.細胞有極性,方便測量,觀察。
c.細胞對無血清有較強的忍受力(至少24小時),因此很多腫瘤細胞系是不適合做劃痕的,很多腫瘤細胞系在無血清培養(yǎng)下,12小時細胞凋亡就超過50%。這也就是transwell發(fā)展的大要求。而一些上皮樣細胞系甚至可以忍受高達72小時的無血清實驗。足以彌合劃痕。
4、其實在傷口彌合中,fibroblast的向創(chuàng)口處遷移就是典型的側(cè)向爬行。但是其實癌細胞的遷移倒不是側(cè)向爬行那么簡單,我覺得應(yīng)該是綜合效應(yīng),而且要看是什么類型的腫瘤。因為對于遠端病灶的轉(zhuǎn)移,顯然是通過血液運輸?shù)?。這是一個細胞去黏附和再黏附的過程。其實transwell也不能很好的模仿這個過程。只是transwell+matrigel可以模仿腫瘤細胞融解基質(zhì),侵入到正常組織的這個過程。也就是侵襲。所以對于做cancer的來說,可能transwell會更好些。但我覺得并不能就簡單否定scar assay。細胞的遷移作為細胞的一個正常生理活動,是表征細胞生理變化的一個重要指標(biāo)。這點是很主要的意義。

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